Диатомеи как эндофиты морских макроводорослей: разнообразие и взаимоотношения с базифитом

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

В обзоре суммируются все известные сведения о видах эндофитных диатомей и их хозяев-макрофитов, приводится история изучения эндофитных диатомей. Обсуждаются механизм проникновения эндофитных диатомей в таллом макроводоросли и влияние, которое оказывают симбионты друг на друга. На основании литературных данных анализируются возможные варианты взаимоотношений между эндофитными диатомеями и базифитом.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. В. Скрипцова

Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жирмунского (ННЦМБ) ДВО РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: askriptsova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5943-4522
Россия, 690041, Владивосток

И. В. Стоник

Национальный научный центр морской биологии им. А.В. Жирмунского (ННЦМБ) ДВО РАН

Email: askriptsova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1467-0374
Россия, 690041, Владивосток

Список литературы

  1. Бегун А.А. Видовой состав Bacillariophyta эпифитона макрофитов в заливе Петра Великого (российское побережье Японского моря) // Альгология. 2013. Т. 23. С. 1–23.
  2. Вассер С.П., Кондратьева Н.В., Масюк Н.П. и др. Водоросли: Справочник. Киев: Наукова думка, 1989.
  3. Лопатина Н.А., Клочкова Н.Г. Явление эндофитизма диатомовых водорослей у пластинчатых багрянок прикамчатских вод // Сохранение биоразнообразия Камчатки и прилегающих морей: материалы ХVIII междунар. науч. конф., посвящ. 70-летию со дня рождения д-ра биол. н. П.А. Хоментовского. Петропавловск-Камчатский: Камчатпресс, 2017. С. 284–287.
  4. Одум Ю. Экология: в 2-х т. Т. 2. М.: Мир, 1986.
  5. Перестенко Л.П. Красные водоросли дальневосточных морей России. СПб.: Ольга, 1994.
  6. Писарева Н.А., Клочкова Н.Г. Два новых вида водорослей рода Neoabbottiella (Rhodophyta: Halymeniales) из морей российского Дальнего Востока // Биол. моря. 2013. Т. 39. № 6. С. 411–421.
  7. Рябушко Л.И. Диатомовые водоросли (Bacillariophyta) залива Восток Японского моря // Биота и среда заповедников Дальнего Востока. 2014. Т. 2. С. 4–17.
  8. Рябушко Л.И., Бондаренко А.В., Широян А.Г. Диатомовые водоросли эпифитона Bryopsis plumosa (Hudson) С. Agardh (Chlorophyta, Bryopsidales) из Чёрного и Эгейского морей // Альгология. 2019. Т. 29. С. 446–462.
  9. Amsler C.D., Amsler M.O., McClintock J.B., Baker B.J. Filamentous algal endophytes in macrophytic Antarctic algae: prevalence in hosts and palatability to mesoherbivores // Phycologia. 2009. V. 48. P. 324–334. https://doi.org/10.2216/08-79.1
  10. Apelt G. Die Symbiose zwischen dem acoelen Turbellar Convoluta convoluta und Diatomeen der Gattung Licmophora // Mar. Biol. 1969. V. 3. P. 165–187. https://doi.org/10.1007/BF00353437
  11. Armstrong E., Rogerson A., Leftley J.W. Utilisation of seaweed carbon by three surface associated heterotrophic protists, Stereomyxa ramosa, Nitzschia alba and Labyrinthula sp. // Aquat. Microb. Ecol. 2000а. V. 21. P. 49–57. https://doi.org/10.3354/ame021049
  12. Armstrong E., Rogerson A., Leftley J.W. The abundance of heterotrophic protists associated with intertidal seaweeds // Estuar. Coast. Shelf Sci. 2000b. V. 50. P. 415–424. https://doi.org/10.1006/ecss.1999.0577
  13. Baardseth E. Localization and structure of alginate gels // Proc. Fifth Int. Seaweed Symp. (Halifax, August 25–28, 1966). P. 19–28. https://doi.org/10.1016/B978-0-08-011841-3.50008-2
  14. Baardseth E., Cuesta M.A. Relationship between the diatom Navicula endophytica Hasle and the brown alga Fucus vesiculosus L., a statistical study // Sarsia. 1983. V. 68. P. 165–169. https://doi.org/10.1080/00364827.1983.1042056
  15. Baardseth E., Taasen J.P. Navicula dumontiae sp. nov., an endophytic diatom inhabiting the mucilage of Dumontia incrassata (Rhodophyceae) // Norw. J. Bot. 1973. V. 20. P. 79–87.
  16. Bavestrello G., Arillo A., Calcinai B. et al. Parasitic diatoms inside Antarctic sponges // Biol. Bull. 2000. V. 198. P. 29–33. https://doi.org/10.2307/1542801
  17. Blackburn M.V., Hannah F., Rogerson A. First account of apochlorotic diatoms from intertidal sand of a south Florida beach // Estuar. Coast. Shelf Sci. 2009a. V. 84. P. 519–526. https://doi.org/10.1016/j.ecss.2009.07.012
  18. Blackburn M.V., Hannah F., Rogerson A. First account of apochlorotic diatoms from mangrove waters in Florida // J. Eukaryotic Microbiol. 2009b. V. 56. P. 194–200. https://doi.org/10.1111/j.1550-7408.2008.00388.x
  19. Booth W.E. Navicula climacospheniae sp. nov., an endophytic diatom inhabiting the stalk of Climacosphenia moniligera Ehrenberg // Nova Hedwigia. 1986. V. 42. P. 295–300.
  20. Bouarab K., Potin P., Weinberger F. et al. The Chondrus crispus–Acrochaete operculata host-pathogen association, a novel model in glycobiology and applied phycopathology // J. Appl. Phycol. 2001. V. 13. P. 185–193. https://doi.org/10.1023/A:1011164031386
  21. Burkholder J.M., Wetzel R.G.. Microbial colonization of natural and artificial macrophytes in a phosphorus-limited, hardwater lake // J. Phycol. 1989. V. 25. P. 55–65. https://doi.org/10.1111/j.0022-3646.1989.00055.x.
  22. Burkholder J.M., Wetzel R.G. Epiphytic alkaline phosphatase on natural and artificial plants in an oligotrophic lake: re-evaluation of the role of macrophytes as a phosphorus source for epiphytes // Limnol. Oceanogr. 1990. V. 35. P. 736–747. https://doi.org/10.4319/lo.1990.35.3.0736
  23. Correa J.A. Infections by pigmented algal endophytes: misuse of concepts and terminology // Rev. Chil. Hist. Nat. 1994. V. 67. P. 5–8.
  24. Costa M.M.S., Pereira S.M.B., Silva-Cunha M.G.G. et al. Community structure of epiphytic diatoms on seaweeds in Northeastern Brazil // Bot. Mar. 2016. V. 59. P. 231–240. https://doi.org/10.1515/bot-2015-0014
  25. Cox G., Larkum A.W.D. A diatom apparently living in symbiosis with a sponge // Bull. Mar. Sci. 1983. V. 33. P. 943–945.
  26. de Stefano M., Romero O.E., Totti C. A comparative study of Cocconeis scutellum Ehrenberg and its varieties (Bacillariophyta) // Bot. Mar. 2008. V. 51. P. 506–536. https://doi.org/10.1515/BOT.2008.058
  27. Frankovich T.A., Ashworth M.P., Sullivan M.J. et al. Epizoic and apochlorotic Tursiocola species (Bacillariophyta) from the skin of Florida Manatees (Trichechus manatus latirostris) // Protist. 2018. V. 169. P. 539–568. https://doi.org/10.1016/j.protis.2018.04.002
  28. Halat L., Galway M.E., Gitto S., Garbary D.J. Epidermal shedding in Ascophyllum nodosum (Phaeophyceae): seasonality, productivity and relationship to harvesting // Phycologia. 2015. V. 54. P. 599–608. https://doi.org/10.2216/15-32.1
  29. Hasle G.R. Navicula endophytica sp. nov., a pennate diatom with an unusual mode of existence // Br. Phycol. Bull. V. 1968. V. 3. № 3. P. 475–480. https://doi.org/10.1080/00071616800650071
  30. Klochkova T.A., Pisareva N.A., Park J.S. et al. An endophytic diatom, Pseudogomphonema sp. (Naviculaceae, Bacillariophyceae), lives inside the red alga Neoabbottiella (Halymeniaceae, Rhodophyta) // Phycologia. 2014. V. 53. P. 205–214. https://doi.org/10.2216/13-229.1
  31. Kociolek P.J., Hamsher S.E. Diatoms: by, with and as endosymbionts // Algal and cyanobacteria symbioses. World Scientific. 2017. P. 371–397. https://doi.org/10.1142/9781786340580_0012
  32. Lee J.J. Algal symbiosis in larger Foraminifera // Symbiosis. 2006. V. 42. P. 63–75. https://doi.org/10.1017/S2475262200002355
  33. Lee J.J. Diatoms as endosymbionts // The diatom world: Cellular origin, life in extreme habitats and astrobiology. Dordrecht: Springer, 2011. V. 19. P. 439–464.
  34. Letáková M., Fránková M., Poulíčková A. Ecology and applications of freshwater epiphytic diatoms – review // Cryptogamie Algol. 2018. V. 39. P. 3–22. https://doi.org/10.7872/crya/v39.iss1.2018.3
  35. Lewin J., Lewin R.A. Culture and nutrition of some apochlorotic diatoms of the genus Nitzschia // J. Gen. Microbiol. 1967. V. 46. P. 361–367. https://doi.org/10.1099/00221287-46-3-361
  36. Li C.W., Volcani B.E. Four new apochlorotic diatoms // Br. Phycol. J. 1987. V. 22. P. 375–382. https://doi.org/10.1080/00071618700650441
  37. Lopatina N.A., Klochkova N.G., Usov A.I. Polysaccharides of algae 69. Monosaccharide composition of polysaccharides of several Pacific red algae studied by reductive hydrolysis of biomass // Russ. Chem. Bull. 2017. V. 66. P. 915–921. https://doi.org/10.1007/s11172-017-1829-1
  38. Mayombo N.A.S., Majewska R., Smit A.J. Diatoms associated with two South African kelp species: Ecklonia maxima and Laminaria pallida // Afr. J. Mar. Sci. 2019. V. 41. P. 221–229. https://doi.org/10.2989/1814232X.2019.1592778
  39. Mayombo N.A.S., Majewska R., Smit A.J. An assessment of the influence of host species, age, and thallus part on kelp-associated diatoms // Diversity. 2020. V. 12. Art. ID 385. https://doi.org/10.3390/d12100385
  40. Moeller R.E., Burkholder J.M., Wetzel R.G. Significance of sedimentary phosphorus to a rooted submersed macrophyte (Najas flexilis) and its algal epiphytes // Aquat. Bot. 1988. V. 32. P. 261–281. https://doi.org/10.1016/0304-3770(88)90120-9
  41. Moss B.L. The control of epiphytes by Halidrys siliquosa (L.) Lyngb. (Phaeophyta, Cystoseiraceae) // Phycologia. 1982. V. 21. P. 185–188. https://doi.org/10.2216/i0031-8884-21-2-185.1
  42. Neill K., Heesch S., Nelson W. Diseases, pathogens and parasites of Undaria pinnatifida. MAF Information Bureau. Wellington, New Zealand, 2008.
  43. Okamoto N., Nagumo T., Tanaka J., Inouye I. An endophytic diatom Gyrosigma coelophilum sp. nov. (Naviculales, Bacillariophyceae) lives inside the red alga Coelarthrum opuntia (Rhodymeniales, Rhodophyceae) // Phycologia. 2003. V. 42. P. 498–505. https://doi.org/10.2216/i0031-8884-42-5-498.1
  44. Potin P. Intimate associations between epiphytes, endophytes, and parasites of seaweeds // Seaweed biology: Ecological studies. V. 219. Berlin; Heidelberg: Springer, 2012. P. 203–234.
  45. Rogerson A., Hannah F.J., Wilson P.C. Nitzschia albicostalis: an apochloritic diatom worthy of ecological consideration // Cah. Biol. Mar. 1993. V. 34. P. 513–522.
  46. Ruesink J.L. Diatom epiphytes on Odonthalia floccosa: the importance of extent and timing // J. Phycol. 1998. V. 34. P. 29–38. https://doi.org/10.1046/j.1529-8817.1998.340029.x
  47. Stancheva R., Lowe R., Lowe R. Diatom symbioses with other photoautotroph // Diatoms: fundamentals and applications. Scrivener Publishing, 2019. P. 225–244. https://doi.org/10.1002/9781119370741.ch10
  48. Stonik I.V., Skriptsova A.V. Pseudogomphonema lukinicum sp. nov. (Bacillariophyceae), a new endophytic diatom found inside multicellular red algae from the Northwest Pacific // Bot. Mar. 2024. V. 67. P. 375–383. https://doi.org/10.1515/bot-2024-0029
  49. Taasen J.P. Observations on Navicula endophytica Hasle (Bacillariophyceae) // Sarsia. 1972. V. 51. P. 67–82. https://doi.org/10.1080/00364827.1972.10411224
  50. Taasen J.P. Navicula fucicola sp. nov., a diatom living in the apical slit of Fucus vesiculosus L. (Phaeophyceae) // Sarsia. 1975. V. 59. P. 1–6. https://doi.org/10.1080/00364827.1975.10411282
  51. Tiffany M.A. Epizoic and epiphytic diatoms. The diatom world: Cellular origin, life in extreme habitats and astrobiology. V. 19. Dordrecht: Springer, 2011. P. 196–209.
  52. Totti C., Poulin M., Romagnoli T. et al. Epiphytic diatom communities on intertidal seaweeds from Iceland // Polar Biol. 2009. V. 32. P. 1681–1691. https://doi.org/10.1007/s00300-009-0668-4
  53. Tuchman N.C., Schollett M.A., Rier S.T., Geddes P. Differential heterotrophic utilization of organic compounds by diatoms and bacteria under light and dark conditions // Hydrobiologia. 2006. V. 561. P. 167–177. https://doi.org/10.1007/s10750-005-1612-4
  54. Ulanova A., Snoeijs P. Lunella garyae sp. nov. – a new polyhalobous diatom from the English Channel coast // Diatom Res. 2006. V. 21. P. 415–426. https://doi.org/10.1080/0269249X.2006.9705679
  55. Wang S., Wang G., Weinberger F. et al. Anti-epiphyte defences in the red seaweed Gracilaria vermiculophylla: non-native algae are better defended than their native conspecifics // J. Ecol. 2017. V. 105. P. 445–457. https://doi.org/10.1111/1365-2745.12694
  56. Witkowski A., Lange-Bertalot H., Metzeltin D. Diatom flora of marine coasts I. Iconographia Diatomologica. V. 7. Königstein: Koeltz Sci, 2000.
  57. Yamamoto K., Endo H., Yoshikawa S. et al. Various defense ability of four sargassacean algae against the red algal epiphyte Neosiphonia harveyi in Wakasa Bay, Japan // Aquat. Bot. 2013. V. 105. P. 11–17. https://doi.org/10.1016/j.aquabot.2012.10.008

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2024