Myocardial metabolic background on chemotherapy and means of their correction

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

Recent years have seen significant progress in the treatment of many oncologicaldiseases associated with the development of new chemotherapeutic agents. Typically, they are used in combination with classical chemotherapy regimens that in-clude doxorubicin. In the background of this combined treatment significant prolongation of life of the patients was noted, but at the same time the risk of cardiotoxicity was considerably increased. The survey provides information about the cardiomyocytesmetabolic disorders during therapy with anthracyclines, discussing the possibility of pathogenetic treatment and prevention.

Full Text

Нарушения метаболизма при терапии антрациклинами Препараты антрациклинового ряда, в частности доксорубицин, до сих пор являются одними из са- мых эффективных и широко применяемых химиоте- рапевтических средств [1]. Использование антрацик- линов ограничено, в частности, возможностью раз- вития тяжелой кардиотоксичности, которая может быть острой или хронической [2–3]. Наибольшее опасение в настоящее время вызывает хроническая кардиотоксичность, проявляющаяся и спустя годы после окончания терапии. Она сопровождается про- грессирующей систолической дисфункцией левого желудочка (ЛЖ), приводящей к необратимой застой- ной сердечной недостаточности. Клинически выра- женная антрациклиновая кардиотоксичность харак- теризуется крайне неблагоприятным прогнозом [4]. Хотя выдвинуто несколько гипотез, объясняющих кардиотоксичность доксорубицина, ни одна из них не считается полностью доказанной. Антрациклино- вая кардиотоксичность является многофакторным процессом, который приводит к апоптозу кардио- миоцитов [5]. Нарушение метаболизма высокоэнер- гетичных фосфатов является важной причиной раз- вития как острой, так и хронической антрациклино- вой кардиотоксичности [6]. Эти механизмы во мно- гом являются общими для многих кардиомиопатий. Сердцу для обеспечения сократимости требуется большое количество энергии. На изолированных мо- делях кардиомиоцитов достаточно давно было пока- зано, что доксорубицин снижает концентрации внутриклеточной аденозинтрифосфорной кислоты (АТФ) и фосфокреатина (ФК) более чем на 50% в течение 24 ч [7] и на 20% при введении эффективной дозы, соответствующей 70-минутной инфузии [8]. Аналогичные результаты были получены in vivo по данным магнитно-резонансной спектроскопии [9]. Уменьшение уровня ФК и соотношения ФК/ATФ на- блюдается в течение нескольких дней после введе- ния однократной высокой дозы доксорубицина, а также после нескольких введений более низких доз. Важно отметить, что долгосрочные последствия на- копленных более низких доз доксорубицина были и более выраженными, чем острые эффекты эквива- лентной разовой дозы. Любопытно, что, по данным магнитно-резонансной спектроскопии, уменьшение соотношения ФК/ATФ сохраняется у пациентов даже через 4 года после окончания химиотерапевтическо- го лечения [10]. Более 90% АТФ, использующейся кардиомиоцита- ми, вырабатывается в процессе митохондриального дыхания. Уже на ранних стадиях доксорубициновой кардиотоксичности развиваются характерные пато- логические изменения митохондрий. Длительное воздействие доксорубицина на изолированные мио- кардиальные митохондрии приводит к быстрому на- рушению окислительных митохондриальных про- цессов [11]. Для изучения воздействия доксорубици- на на метаболизм кислорода в миокарде у пациентов использовалась позитронно-эмиссионная томогра- фия [12]. И, хотя в данном исследовании доксоруби- цин не оказал значимого влияния на кровоток и ин- тенсивность цикла Кребса при остром и хрониче- ском введении, это не доказывает отсутствие измене- ний в окислительном фосфорилировании. Помимо интерпретации глобальных эффектов доксорубцина на митохондриальное дыхание, не- сколько исследований пытались выделить ряд специ- фических респираторных комплексов, поврежден- ных доксорубицином. Из проведенных эксперимен- тальных исследований следует, что мишенями для токсичного воздействия доксорубицина являются разные ступени транспорта электронов с возможно более высокой восприимчивостью никотинамидаде- ниндинуклеотид-дегидрогеназы и цитохрома с-ок- сидазы [13]. Кроме дефектов в транспортной цепи электронов, доксорубицин также оказывает повреждающее дей- ствие на парный синтез АТФ. Другими мишенями док- сорубицина, которые потенциально могут нарушать окислительную выработку АТФ, являются белково-ли- пидные комплексы, вовлеченные в передачу АТФ и ФК из митохондрии в цитозоль. Есть несколько ис- следований, которые позволяют предположить, что доксорубицин способствует ухудшению функции этих комплексов. Доксорубицин поражает аденинсо- держащий переносчик 1, изоформу, которая преиму- щественно содержится в сердце, и переносчик не- органического фосфата, гомолога аденинсодержаще- го переносчика [14], а также препятствует нормаль- ной функции митохондриальной креатинкиназы. Следует добавить, что доксорубицин, помимо за- пуска функциональных изменений, регулирует уча- стие ряда митохондриальных энзимов в дыхании и окислительном фосфорилировании. Сердце способно утилизировать разные субстра- ты для обеспечения своих высоких энергетических потребностей. В нормальных условиях предпочти- тельным субстратом являются жирные кислоты (ЖК), обеспечивающие выработку от 60 до 80% всей АТФ в миокарде. Однако при окислении ЖК для вы- работки определенного количества АТФ требуется примерно на 10% больше кислорода, чем при окис- лении глюкозы [15]. При использовании клеточных культур в опытах на животных было установлено, что доксорубицин ока- зывает негативное влияние на метаболизм ЖК в серд- це [16]. При лечении доксорубицином происходит увеличение уровня ЖК в сыворотке [17]. Доксоруби- цин препятствует окислению пальмитата, ЖК длин- ной цепи. В качестве возможного механизма было предложено повреждение карнитинпальмитоилтран- сферазы-1 и/или истощение запасов L-карнитина. При сердечно-сосудистых заболеваниях, по крайней мере на их ранних стадиях, ослабление перекисного окисления липидов сопровождается усилением ути- лизации глюкозы в качестве компенсаторного меха- низма. При лечении доксорубицином ситуация скла- дывается по-другому. Кардиомиопатия, индуцирован- ная доксорубицином, связана с понижением утилиза- ции каждого из субстратов, как ЖК, так и глюкозы [18]. Пониженная скорость гликолиза может быть след- ствием действия доксорубицина на поддержание уровня глюкозы и/или на возможность клеток стиму- лировать ее выработку. Лечение доксорубицином приводит к транзиторному повышению поглощения глюкозы в кардиомиоцитах примерно на 50% в тече- ние 1 ч, за которым следует значительное снижение [19]. Другой причиной уменьшения гликолиза может быть повреждение фосфофруктокиназы – фермента, лимитирующего скорость гликолиза. Доксорубицин не только уменьшает общую выра- ботку энергетических субстратов, но также очень ра- но приводит к повышенному специфическому по- вреждению изоферментов креатинкиназы. В сердце цитозольные и митохондриальные изоформы креа- тинкиназы вместе с креатином и ФК обеспечивают важную клеточную, энергетическую, буферную и транспортную функцию, связывая между собой про- цессы выработки и потребления энергии. Было установлено, что доксорубицин повреждает структуру и нарушает функцию изоформ креатинки- назы in vitro, включая митохондриальную креатинки- назу [20]. При этом сердечная форма митохондриаль- ной креатинкиназы оказалась более чувствительной к доксорубицину. Такая разная чувствительность мито- хондриальной креатинкиназы к доксорубицину мо- жет объяснить селективную токсичность препарата по отношению к сердечной ткани. Нарушение функ- ции этого изофермента может стать причиной дисба- ланса кальция, нарушающего процессы сокращения и расслабления, может приводить к хроническому из- бытку кальция и/или апоптозу и некрозу клеток. Доксорубицин вызывает повреждение разных сту- пеней метаболизма кардиомиоцитов, включая паде- ние базального уровня фосфатов, ФК и АТФ, умень- шение окислительной способности митохондрий, изменение особенностей утилизации энергетиче- ских субстратов, нарушение энергетического обмена в промежутке времени между выработкой энергии и потреблением таковой креатинфосфокиназой. Важно, что структурные изменения в сердечной тка- ни появляются значительно раньше клинических проявлений сердечной недостаточности. Это означа- ет, что компенсаторные механизмы могут поддержи- вать функцию сердца в течение определенного време- ни, несмотря на нарастающее повреждение миокарда. Возможности коррекции и профилактики нарушений метаболизма на фоне химиотерапевтического лечения Нарушения метаболизма при клинически выра- женной антрациклиновой кардиомиопатии во многом сходны с нарушениями метаболизма при сердеч- ной недостаточности другой этиологии. На начальных стадиях ремоделирования сердца происходит адаптивное увеличение метаболизма глюкозы и уменьшение b-окисления ЖК [21], однако при дальнейшем прогрессировании заболевания происходит метаболическая дезадаптация вслед- ствие блокады переносчиков глюкозы GLUT-1, GLUT- 4 и снижения окисления глюкозы [22]. Хроническая сердечная недостаточность (ХСН) сопровождается морфологическими изменениями митохондрий в виде уменьшения их размера и нарушения структур- ной целостности [23]. При этом степень поврежде- ния митохондрий коррелирует с такими показателя- ми тяжести ХСН, как уровень норадреналина и фрак- ция выброса ЛЖ [24]. Кроме того, показано, что при ХСН миокард не способен поддерживать ресинтез необходимого количества высокоэнергетичных фосфатов даже при умеренных нагрузках. Отмечает- ся снижение синтеза креатина, креатинфосфата и АТФ. Наряду с нарушением образования АТФ при ХСН нарушаются пути транспорта и утилизации энергии, связанные с разнообразными нарушениями системы креатинкиназы [22]. Данные нарушения, в частности, ведут к снижению обратного захвата ионов кальция саркоплазматическим ретикулумом вследствие блокады кальциевой АТФазы (SERCA) [25]. Нарушение структуры цитоскелета, происходящее при ХСН, может приводить к разрыву энергетиче- ских связей между митохондриями и энергопотреб- ляющими органеллами [25]. Стратегия коррекции нарушений метаболизма при ХСН ишемической и неишемической этиологии ак- тивно изучалась в последние десятилетия. Наиболь- шей доказательной базой из препаратов цитопротек- тивного действия при ХСН обладает триметазидин МВ (Предуктал МВ, «Лаборатории Сервье», Франция). Триметазидин МВ изменяет метаболизм миокарда за счет переориентации метаболического пути обра- зования энергии от ЖК к глюкозе. Блокада длинноце- почечной 3-кетоацил-коэнзим-А-тиолазы [26] при- водит к снижению b-окисления ЖК и увеличению окислительного гликолиза [27]. Клиническая эффективность триметазидина МВ при ХСН изучена во множестве отечественных и за- рубежных исследований, в том числе с использова- нием позитронной эмиссионной томографии [28]. В 2011 и 2012 гг. были опубликованы два независи- мых метаанализа эффективности триметазидина МВ при ХСН ишемической и неишемической этиологии [29, 30]. Результаты анализа 17 исследований, вклю- чавших более 900 пациентов, показали достоверное увеличение фракции выброса ЛЖ на фоне терапии триметазидином МВ не только при ишемической, но и при неишемической этиологии ХСН (на 8,72%, 95% доверительный интервал 5,51–11,92; p<0,01). Также были получены данные о благоприятном влиянии триметазидина МВ на прогноз пациентов с ХСН. Исследований по изучению триметазидина МВ в лечении и профилактике антрациклиновой кардио- токсичности к настоящему моменту проведено не так много. В экспериментальном исследовании про- филактическое назначение триметазидина МВ за 5 дней до начала терапии доксорубицином привело к значительному уменьшению повреждения сердца по данным повышения уровня креатинфосфокиназы- MB [31]. На ультраструктурном уровне триметазидин МВ приводил к отсутствию отека и мононуклеарной клеточной инфильтрации миокарда, а также измене- М Е Д И К А М Е Н Т О З Н А Я Т Е Р А П И Я‌ ний митохондрий за счет уменьшения маркеров окислительного стресса и увеличения антиоксидант- ной активности. На экспериментальной модели диабетической кар- диомиопатии, также характеризующейся активацией усиления оксидативного стресса в сочетании с инак- тивацией аденозинмонофосфатактивированной протеинкиназы (AMФK), было показано, что терапия триметазидином МВ в течение 8 нед привела к улуч- шению систолической и диастолической функции ЛЖ на фоне уменьшения образования реактивных форм кислорода и активации AMФK [32]. В 2002 г. в журнале Lancet был опубликован клини- ческий случай, в котором триметазидин МВ проде- монстрировал высокую эффективность у пациентки с острой кардиотоксичностью на фоне терапии док- сорубицином со снижением фракции выброса ЛЖ с 58 до 38% [33]. Лечение триметазидином МВ позволи- ло практически полностью восстановить систоличе- скую функцию ЛЖ до 53%. Трехмесячная терапия триметазидином МВ на фо- не высокодозной терапии антрациклинами позволи- ла уменьшить диастолическую дисфункцию ЛЖ, а также частоту и длительность эпизодов развития де- прессии сегмента ST по данным суточного монито- рирования электрокардиографии [34]. При достиже- нии кумулятивных доз доксорубицина более 1000 мг/м2 в контрольной группе отмечалось значитель- ное снижение систолической функции ЛЖ, в то вре- мя как при терапии триметазидином МВ фракция вы- броса ЛЖ достоверно не изменялась [35]. С учетом механизма возникновения нарушений метаболизма на фоне терапии доксорубицином пер- спективной является идея первичной профилактики кардиотоксического действия триметазидином МВ. Пока эта стратегия была проверена лишь в одном не- большом проспективном исследовании при раке мо- лочной железы. В исследовании у 61 пациентки, ко- торой проводилась химиотерапия, триметазидин МВ продемонстрировал сходные кардиопротективные свойства с дексразоксаном [36]. Кроме нарушений метаболических процессов на фоне химиотерапии, следует также учитывать мета- болические нарушения, связанные собственно с он- кологическим заболеванием. В связи с этим большой интерес представляют данные о важной роли повы- шения b-окисления ЖК в патогенезе целого ряда он- кологических заболеваний, которые были суммиро- ваны в обзоре, опубликованном в 2013 г. в журнале Nature Reviews Cancer [37]. Более того, авторы считают перспективным изучение противоопухолевой актив- ности препаратов, блокирующих b-окисление ЖК. Таким образом, нарушения метаболизма, в частно- сти изменение интенсивности b-окисления ЖК, про- цессов образования транспорта и утилизации АТФ, играют существенную роль как в патогенезе онколо- гических заболеваний, так и в патогенезе развития кардиотоксического действия доксорубицина. Струк- турные нарушения в кардиомиоцитах возникают за- долго до клинических проявлений и начинаются да- же после однократного воздействия. Все это делает весьма привлекательной идею профилактики метабо- лических нарушений во время химиотерапии. Триметазидин МВ – препарат метаболического действия с обширной доказательной базой в кардио- логии, продемонстрировавший высокую эффектив- ность и безопасность при ХСН ишемического и не- ишемического генеза. Сходный патогенез метаболи- ческих нарушений при воздействии доксорубицина | www.con-med.ru | 2013 | ТОМ 4 | № 4 | КАРДИОСОМАТИКА и при ХСН, результаты экспериментальных и еди- ничных клинических исследований по применению триметазидина МВ для лечения и профилактики кар- диотоксического действия доксорубицина позво- ляют предположить его высокую эффективность. Окончательное место триметазидина МВ в профи- лактике повреждения миокарда при химиотерапии может быть установлено после проведения рандоми- зированных клинических исследований.
×

About the authors

Yu. A Vasyuk

Moscow State University of Medicine and Dentistry

E. L Shkolnik

Moscow State University of Medicine and Dentistry

Email: eshkolnik@mail.ru

V. V Nesvetov

Moscow State University of Medicine and Dentistry

L. D Shkolnik

14th Korolenko City Clinical Hospital

G. V Varlan

14th Korolenko City Clinical Hospital

A. V Pilschikov

20th Moscow City Policlinic

References

  1. Chu E. Physicians' Cancer Chemotherapy Drug Manual 2013. Jones & Bartlett Publishers 2012.
  2. Swain S, Whaley F.S, Ewer M.S. Congestive heart failure in patients treated with doxorubicin: a retrospective analysis of three trials. Cancer 2003; 97: 2869–79.
  3. Mercuro G, Cadeddu C, Piras A et al. Early epirubicin - induced myocardial dysfunction revealed by serial tissue doppler echocardiography: correlation with inflammatory and oxidative stress markers. Oncologist 2007; 12: 1124–33.
  4. Von Hoff D.D, Layard M.W, Basa P et al. Risk factors for doxorubicininduced congestive heart failure. Ann Intern Med 1979; 91: 710–7.
  5. Minotti G, Menna P, Salvatorelli E et al. Anthracyclines: molecular advances and pharmacologic developments in antitumor activity and cardiotoxicity. Pharmacol Rev 2004; 56: 185–229.
  6. Tokarska-Schlattner M, Wallimann T, Schlattner U. Alterations in myocardial energy metabolism induced by the anti - cancer drug doxorubicin. C R Biol 2006; 329 (9): 657–68.
  7. Jeyaseelan R, Poizat C, Wu H.Y, Kedes L. Molecular mechanisms of doxorubicin - induced cardiomyopathy. Selective suppression of Reiske iron - sulfur protein, ADP/ATP translocase, and phosphofructokinase genes is associated with ATP depletion in rat cardiomyocytes. J Biol Chem 1997; 272: 5828–32.
  8. Pelikan P.C, Weisfeldt M.L, Jacobus W.E et al. Acute doxorubicin cardiotoxicity: functional, metabolic, and morphologic alterations in the isolated, perfused rat heart. J Cardiovasc Pharmacol 1986; 8: 1058–66.
  9. Nicolay K, Aue W.P, Seelig J et al. Effects of the anti - cancer drug adriamycin on the energy metabolism of rat heart as measured by in vivo 31PNMR and implications for adriamycin - induced cardiotoxicity. Biochim Biophys Acta 1987; 929: 5–13.
  10. Eidenschink A.B, Schroter G, Muller-Weihrich S, Stern H. Myocardial high - energy phosphate metabolism is altered after treatment with anthracycline in childhood. Cardiol Young 2000; 10: 610–7.
  11. Praet M, Ruysschaert J.M. In - vivo and in - vitro mitochondrial membrane damages induced in mice by adriamycin and derivatives. Biochim Biophys Acta 1993; 1149: 79–85.
  12. Nony P, Guastalla J-P, Rebattu P et al. In vivo measurement of myocardial oxidative metabolism and blood flow does not show changes in cancer patients undergoing doxorubicin therapy. Cancer Chemother Pharmacol 2000; 45: 375–80.
  13. Muraoka S, Miura T. Inactivation of mitochondrial succinatede - hydrogenase by adriamycin activated by horseradish peroxidase and hydrogen peroxide. Chem Biol Interact 2003; 145: 67–75.
  14. Zhou S, Starkov A, Froberg M.K et al. Cumulative and irreversible cardiac mitochondrial dysfunction induced by doxorubicin. Cancer Res 2001; 61: 771–7.
  15. Lopaschuk G.D, Belke D.D, Gamble J et al. Regulation of fatty acid oxidation in the mammalian heart in health and disease. Biochim Biophys Acta 1994; 1213: 263–76.
  16. Bordoni A, Biagi P, Hrelia S. The impairment of essential fatty acid metabolism as a key factor in doxorubicin - induced damage in cultured rat cardiomyocytes. Biochim Biophys Acta 1999; 1440: 100–6.
  17. Hong Y.M, Kim H.S, Yoon H.R. Serum lipid and fatty acid profiles in adriamycin - treated rats after administration of L-carnitine. Pediatr Res 2002; 51: 249–55.
  18. Wakasugi S, Fischman A.J, Babich J.W et al. Myocardial substrate utilization and left ventricular function in adriamycin cardiomyopathy. J Nucl Med 1993; 34: 1529–35.
  19. Hrelia S, Fiorentini D, Maraldi T et al. Doxorubicin induces early lipid peroxidation associated with changes in glucose transport in cultured cardiomyocytes. Biochim Biophys Acta 2002; 1567: 150–6.
  20. Tokarska-Schlattner M, Wallimann T, Schlattner U. Multiple interference of anthracyclines with mitochondrial creatine kinases: preferential damage of the cardiac isoenzyme and its implications for drug cardiotoxicity Mol Pharmacol 2002; 61: 516–23.
  21. Taegtmeyer H. Metabolism – the lost child of cardiology. J Am Coll Cardiol 2000; 36: 1386–8.
  22. Ventura-Clapier R, Garnier A, Veksler V. Energy metabolism in heart failure J Physiol 2003; 555 (1): 1–13.
  23. Schaper J, Froede R, Hein St et al. Impairment of the myocardial ultrastructure and changes of the cytoskeleton in dilated cardiomyopathy. Circulation 1991; 83: 504–14.
  24. Sabbah H.N, Sharov V, Riddle J.M et al. Mitochondrial abnormalities in myocardium of dogs with chronic heart failure. J Mol Cell Cardiol 1992; 24: 1333–47.
  25. De Sousa E, Veksler V, Minajeva A et al. Subcellular creatine kinase alterations – Implications in heart failure. Circ Res 1999; 85: 68–76.
  26. Lopaschuk G.D, Barr R, Thomas P.D, Dyck J.R. Beneficial effects of trimetazidine in ex vivo working ischemic hearts are due to a stimulation of glucose oxidation secondary to inhibition of long - chain 3- ketoacyl coenzyme a thiolase. Circ Res 2003; 93 (3): e33–7.
  27. Lopaschuk G.D, Kozak R. Trimetazidine inhibits fatty acid oxidation in the heart. J Mol Cell Cardiol 1998; 30: A112–A113.
  28. Хадзегова А.Б., Васюк Ю.А., Ющук Е.Н. и др. Возможности миокардиальной цитопротекции в комплексном лечении больных с хронической сердечной недостаточностью. Кардиология. 2006; 11: 48–56.
  29. Gao D, Ning N, Niu X et al. Trimetazidine: a meta - analysis of randomised controlled trials in heart failure. Heart 2011; 97 (4): 278–86.
  30. Zhang L, Lu Y, Jiang H et al. Additional use of trimetazidine in patients with chronic heart failure: a meta - analysis. J Am Coll Cardiol 2012; 59 (10): 913–22.
  31. Amal Mohamed Moustafa Y, Amany Abd-Elrahman M. Shalahy impact of trimetazidine on doxorubicin - induced acute cardiotoxicity in mice:a biochemical and electron microscopic study. Egyptian J Histology 2006; 29 (1): 125–36.
  32. Li Y.J, Wang P.H, Chen C et al. Improvement of mechanical heart function by trimetazidine in db/db mice. Acta Pharmacol Sin 2010; 31 (5): 560–9.
  33. Pascale C, Fornengo P, Epifani G et al. Cardioprotection of trimetazidine and anthracycline - induced acute cardiotoxic effects. Lancet 2002; 359: 1153–4.
  34. Калинкина Н.В. Влияние триметазидина на безболевую ишемию миокарда и диастолическую функцию левого желудочка у пациентов, получающих антрациклиновые антибиотики. Вестн. неотложной и восстановительной медицины. 2006; 2: 195–8.
  35. Ватутин Н.Т., Калинкина Н.В., Риджок В.В., Столика О.И. Влияние триметазидина на вариабельность сердечного ритма и систолическую функцию левого желудочка у пациентов, получающих антрациклиновые антибиотики. Кровообіг та гемостаз. 2005; 3–4: 141–5.
  36. Tallarico D, Rizzo V, Di Maio F. Myocardial cytoprotection by trimetazidine against anthracycline - induced cardiotoxicity in anticancer chemotherapy Angiology 2003; 54 (2): 219–2.
  37. Carracedo A, Cantley L.C, Pandolfi P.P. Cancer metabolism: fatty acid oxidation in the limelight Nature Reviews Cancer/AOP 2013; doi: 10.1038/nrc3483

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2013 Eco-Vector

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС 77 - 64546 от 22.01.2016. 


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies