Исследование кинетики переноса электронов между редокс-кофакторами в фотосистеме 1 методами высокочастотной ЭПР-спектроскопии

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

С помощью высокочастотной импульсной ЭПР-спектроскопии в Q-диапазоне при криогенных температурах впервые одновременно исследованы кинетики редокс-превращений первичного донора электрона Р700+ и хинонного акцептора А1 в различных комплексах фотосистемы 1 (ФС 1) из цианобактерий Synechocystis sp. PCC 6803 во временном диапазоне 200 мкс – 10 мс. В комплексах А1-core ФС 1, не содержащих железо-серных (4Fe4S) кластеров, кинетики исчезновения сигналов А1 и Р700+ при температуре 100 К совпадали и имели характерное время τ ≈ 500 мкс, обусловленное рекомбинацией зарядов в ион-радикальной паре Р700+А1A в ветви редокс-кофакторов А. Кинетика обратного переноса электрона с А1В на Р700+ в ветви редокс-кофакторов В с τ < 100 мкс не могла быть зарегистрирована в связи с временными ограничениями метода. В нативных комплексах ФС 1, содержащих полный набор редокс-кофакторов, и в комплексах FX-core, содержащих 4Fe4S-кластер FX, кинетика сигнала А1 была существенно быстрее, чем сигнала Р700+. Исчезновение сигнала А1 имело характерное время 280–350 мкс; было предположено, что, помимо обратного переноса электрона с А1А на Р700+ с τ ≈ 500 мкс, в его кинетику вносит вклад прямой перенос электрона с А1А на 4Fe4S-кластер FX, замедлившийся до 150–200 мкс. В кинетике восстановления Р700+ можно было выделить компоненты, обусловленные обратным переносом электрона с А1 (τ ≈ 500 мкс) и с 4Fe4S-кластеров (τ = 1 мс для FX-core и τ > 5 мс для нативных комплексов). Эти результаты качественно согласуются с данными по кинетике восстановления Р700+, полученными ранее с помощью импульсной абсорбционной спектрометрии при криогенных температурах.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

А. А. Суханов

Казанский физико-технический институт им. Е.К. Завойского – обособленное структурное подразделение Казанского научного центра РАН

Email: milanovsky@belozersky.msu.ru
Россия, 420111, Казань

Г. Е. Милановский

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Автор, ответственный за переписку.
Email: milanovsky@belozersky.msu.ru
Россия, 119992, Москва

Л. А. Витухновская

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова; Федеральный исследовательский центр химической физики им. Н.Н. Семёнова РАН

Email: milanovsky@belozersky.msu.ru
Россия, 119992, Москва; 119991, Москва

М. Д. Мамедов

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: milanovsky@belozersky.msu.ru
Россия, 119992, Москва

К. М. Салихов

Казанский физико-технический институт им. Е.К. Завойского – обособленное структурное подразделение Казанского научного центра РАН

Email: milanovsky@belozersky.msu.ru
Россия, 420111, Казань

А. Ю. Семенов

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: semenov@belozersky.msu.ru
Россия, 119992, Москва

Список литературы

  1. Milanovsky, G., Gopta, O., Petrova, A., Mamedov, M., Gorka, M., Cherepanov, D., Golbeck, J. H., and Semenov, A. (2019) Multiple pathways of charge recombination revealed by the temperature dependence of electron transfer kinetics in cyanobacterial photosystem I, Biochim. Biophys. Acta Bioenerg., 1860, 601-610, https://doi.org/10.1016/ j.bbabio.2019.06.008.
  2. Brettel, K. (1997) Electron transfer and arrangement of the redox cofactors in photosystem I, Biochim. Biophys. Acta Bioenerg., 1318, 322-373, https://doi.org/10.1016/S0005-2728(96)00112-0.
  3. Brettel, K., and Leibl, W. (2001) Electron transfer in photosystem I, Biochim. Biophys. Acta Bioenerg., 1507, 100-114, https://doi.org/10.1016/S0005-2728(01)00202-X.
  4. Golbeck, J. H. (2006) Photosystem I. The Light-Driven Plastocyanin: Ferredoxin Oxidoreductase, Springer Netherlands, Dordrecht, https://doi.org/10.1007/978-1-4020-4256-0.
  5. Fromme, P., Jordan, P., and Krauß, N. (2001) Structure of photosystem I, Biochim. Biophys. Acta Bioenerg., 1507, 5-31, https://doi.org/10.1016/S0005-2728(01)00195-5.
  6. Shelaev, I. V., Gostev, F. E., Mamedov, M. D., Sarkisov, O. M., Nadtochenko, V. A., Shuvalov, V. A., and Semenov, A. Y. (2010) Femtosecond primary charge separation in Synechocystis sp. PCC 6803 photosystem I, Biochim. Biophys. Acta, 1797, 1410-1420, https://doi.org/10.1016/j.bbabio.2010.02.026.
  7. Cherepanov, D. A., Shelaev, I. V., Gostev, F. E., Petrova, A., Aybush, A. V., Nadtochenko, V. A., Xu, W., Golbeck, J. H., and Semenov, A. Y. (2021) Primary charge separation within the structurally symmetric tetrameric Chl2APAPBChl2B chlorophyll exciplex in photosystem I, J. Photochem. Photobiol. B Biol., 217, 112154, https://doi.org/10.1016/ J.JPHOTOBIOL.2021.112154.
  8. Brettel, K., and Vos, M. H. (1999) Spectroscopic resolution of the picosecond reduction kinetics of the secondary electron acceptor A1 in photosystem I, FEBS Lett., 447, 315-317, https://doi.org/10.1016/S0014-5793(99)00317-8.
  9. Savikhin, S., Xu, W., Martinsson, P., Chitnis, P. R., and Struve, W. S. (2001) Kinetics of charge separation and A0–→A1 electron transfer in photosystem I reaction centers, Biochemistry, 40, 9282-9290, https://doi.org/10.1021/bi0104165.
  10. Joliot, P., and Joliot, A. (1999) In vivo analysis of the electron transfer within photosystem I: are the two phylloquinones involved? Biochemistry, 38, 11130-11136, https://doi.org/10.1021/bi990857c.
  11. Guergova-Kuras, M., Boudreaux, B., Joliot, A., Joliot, P., and Redding, K. (2001) Evidence for two active branches for electron transfer in photosystem I, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 98, 4437-4442, https://doi.org/10.1073/pnas.081078898.
  12. Muhiuddin, I. P., Heathcote, P., Carter, S., Purton, S., Rigby, S. E. J., and Evans, M. C. W. (2001) Evidence from time resolved studies of the P700+/A1– radical pair for photosynthetic electron transfer on both the PsaA and PsaB branches of the photosystem I reaction centre, FEBS Lett., 503, 56-60, https://doi.org/10.1016/S0014-5793(01)02696-5.
  13. Schlodder, E., Falkenberg, K., Gergeleit, M., and Brettel, K. (1998) Temperature dependence of forward and reverse electron transfer from A1– , the reduced secondary electron acceptor in photosystem I, Biochemistry, 37, 9466-9476, https://doi.org/10.1021/bi973182r.
  14. Brettel, K., and Golbeck, J. H. (1995) Spectral and kinetic characterization of electron acceptor A1 in a Photosystem I core devoid of iron-sulfur centers FX, FB and FA, Photosynth. Res., 45, 183-193, https://doi.org/10.1007/BF00015559.
  15. Möbius, K., and Savitsky, A. (2008) High-Field EPR Spectroscopy on Proteins and their Model Systems, Royal Society of Chemistry, Cambridge, https://doi.org/10.1039/9781847559272.
  16. Savitsky, A., Gopta, O., Mamedov, M., Golbeck, J. H., Tikhonov, A., Möbius, K., and Semenov, A. (2010) Alteration of the axial met ligand to electron acceptor A0 in photosystem I: effect on the generation of P 700+A1 − radical pairs as studied by W-band transient EPR, Appl. Magn. Reson., 37, 85-102, https://doi.org/10.1007/s00723-009-0052-0.
  17. Malferrari, M., Savitsky, A., Mamedov, M. D., Milanovsky, G. E., Lubitz, W., Möbius, K., Semenov, A. Y., and Venturoli, G. (2016) Trehalose matrix effects on charge-recombination kinetics in Photosystem I of oxygenic photosynthesis at different dehydration levels, Biochim. Biophys. Acta Bioenerg., 1857, 1440-1454, https:// doi.org/10.1016/j.bbabio.2016.05.001.
  18. Shelaev, I., Gorka, M., Savitsky, A., Kurashov, V., Mamedov, M., Gostev, F., Möbius, K., Nadtochenko, V., Golbeck, J., and Semenov, A. (2017) Effect of dehydrated trehalose matrix on the kinetics of forward electron transfer reactions in photosystem I, Zeitschrift Phys. Chemie, 231, 325-345, https://doi.org/10.1515/zpch-2016-0860.
  19. Poluektov, O. G., Paschenko, S. V., Utschig, L. M., Lakshmi, K. V., and Thurnauer, M. C. (2005) Bidirectional electron transfer in photosystem I: direct evidence from high-frequency time-resolved EPR spectroscopy, J. Am. Chem. Soc., 127, 11910-11911, https://doi.org/10.1021/ja053315t.
  20. Poluektov, O. G., and Utschig, L. M. (2015) Directionality of electron transfer in type I reaction center proteins: high-frequency EPR study of PS I with removed iron-sulfur centers, J. Phys. Chem. B, 119, 13771-13776, https://doi.org/10.1021/ACS.JPCB.5B04063.
  21. Rippka, R., Deruelles, J., Waterbury, J. B., Herdman, M., and Stanier, R. Y. (1979) Generic assignments, strain histories and properties of pure cultures of cyano-bacteria, J. Gen. Microbiol., 11, 1-61, https://doi.org/10.1099/ 00221287-111-1-1.
  22. Shen, G., Zhao, J., Reimer, S. K., Antonkine, M. L., Cai, Q., Weiland, S. M., Golbeck, J. H., and Bryant, D. A. (2002) Assembly of photosystem I. I. Inactivation of the rubA gene encoding a membrane-associated rubredoxin in the cyanobacterium Synechococcus sp. PCC 7002 causes a loss of photosystem I activity, J. Biol. Chem., 277, 20343-20354, https://doi.org/10.1074/jbc.M201103200.
  23. Mula, S., Savitsky, A., Möbius, K., Lubitz, W., Golbeck, J. H., Mamedov, M. D., Semenov A. Y., and van der Est, A. (2012) Incorporation of a high potential quinone reveals that electron transfer in Photosystem I becomes highly asymmetric at low temperature, Photochem. Photobiol. Sci., 11, 946, https://doi.org/10.1039/c2pp05340c.
  24. MATLAB: 9.14.0, The MathWorks Inc., Natick, Massachusetts (2023) URL: https://www.mathworks.com/.
  25. Vassiliev, I. R., Jung, Y. S., Mamedov, M. D., Semenov, A. Yu., and Golbeck, J. H. (1997) Near-IR absorbance changes and electrogenic reactions in the microsecond-to-second time domain in Photosystem I, Biophys. J., 72, 301-315, https://doi.org/10.1016/S0006-3495(97)78669-7.
  26. Shen, G., Antonkine, M. L., van der Est, A., Vassiliev, I. R., Brettel, K., Bittl, R., Zech, S. G., Zhao, J., Stehlik, D., Bryant, D. A., and Golbeck, J. H. (2002) Assembly of photosystem I. II. Rubredoxin is required for the in vivo assembly of F(X) in Synechococcus sp. PCC 7002 as shown by optical and EPR spectroscopy, J. Biol. Chem., 277, 20355-20366, https://doi.org/10.1074/jbc.M201104200.
  27. Cherepanov, D. A., Milanovsky, G. E., Gopta, O. A., Balasubramanian, R., Bryant, D. A., Semenov, A. Y., and Golbeck, J. H. (2018) Electron-phonon coupling in cyanobacterial photosystem I, J. Phys. Chem. B, 122, 7943-7955, https://doi.org/10.1021/acs.jpcb.8b03906.
  28. Salikhov, K. M., Kandrashkin, Y. E., and Salikhov, A. K. (1992) Peculiarities of free induction and primary spin echo signals for spin-correlated radical pairs, Appl. Magn. Reson., 3, 199-216, https://doi.org/10.1007/ BF03166790.
  29. Salikhov, K. M., Sukhanov, A. A., and Khairutdinov, I. T. (2024) Features of the primary electron spin echo signal for spin-correlated radical pairs, Appl. Magn. Reson., 55, 463-475, https://doi.org/10.1007/s00723-023-01636-6.
  30. Salikhov, K. M., Molin, Y. N., Sagdeev, R. Z., and Buchachenko, A. L. (1984) Spin polarization and magnetic effects in radical reactions, in Studies in Physical and Theoretical Chemistry, Elsevier, Amsterdam, Netherlands.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Схема переноса электронов в ФС 1 цианобактерий: редокс-потенциалы основных кофакторов ФС 1 и времена прямых реакций переноса электрона (а); структурная схема нативных (б) и лишённых 4Fe4S-кластеров комплексов A1-core ФС 1 (в). Редокс-кофакторы показаны: димер Хл Р700 – красным, Хл А0 – зелёным, филлохиноны А1А и А1В – синим. 4Fe4S-Кластеры на рис. 1, б показаны жёлто-голубыми кубиками. PsaA, PsaB и PsaC – белковые субъединицы, содержащие кофакторы переноса электрона. Синими и красными стрелками показаны наблюдаемые в эксперименте прямые и обратные реакции переноса электрона соответственно, сине-красными стрелками показана реакция рекомбинации зарядов пары Р+700A1–A, наблюдаемая при исчезновении как сигнала Р+700, так и A1–. Пунктиром на панелях б и в показан перенос электрона, не регистрируемый в представленных ниже экспериментах

Скачать (275KB)
3. Рис. 2. Протокол эксперимента регистрации кинетики изменения сигналов ЭПР

Скачать (38KB)
4. Рис. 3. Индуцированная лазерными вспышками рекомбинация зарядов в комплексах ФС 1, регистрируемая как уменьшение поглощения на длине волны 820 нм при комнатной температуре для комплексов A1-core (а), комплексов FX-core (б) и полного комплекса ФС 1 (в). Указаны характерные времена и относительные амплитуды основных компонент рекомбинации. Поглощение указано в условных единицах, нормированных на максимум сигнала

Скачать (166KB)
5. Рис. 4. Эхо-детектированные спектры ЭПР трёх комплексов ФС 1 при 100 К в Q-диапазоне СВЧ. а – Спектры нативной ФС 1 при двух различных временных задержках; б – спектры нативного комплекса ФС 1, FX-core- и A1-core-комплексов, записанные при временной задержке 0,28 мс. Стрелками показаны точки спектра, в которых снимались кинетики. А, Е – поглощение и испускание СВЧ образцом соответственно

Скачать (144KB)
6. Рис. 5. Кинетика ЭПР-сигналов A1– и P+700 в комплексах A1-core ФС 1 при 100 К. Исходная кинетика показана чёрными сплошными линиями, компоненты фиттинга показаны тонкими красными пунктирными линиями, сумма компонентов фиттинга показана чёрной пунктирной линией. Амплитуда сигнала указана в условных единицах, нормированных на максимум компонент сигнала

Скачать (207KB)
7. Рис. 6. Кинетика ЭПР-сигналов A1– и P+700 в комплексах FX-core ФС 1 при 100 К. Обозначения такие же, как на рис. 5

Скачать (190KB)
8. Рис. 7. Кинетика ЭПР-сигналов A1– и P+700 в комплексах нативной ФС 1 при 100 К. Обозначения такие же, как на рис. 5

Скачать (203KB)

© Российская академия наук, 2024