Гематологические особенности тресковых рыб (Gadidae) Северо-Западной Пацифики

Обложка
  • Авторы: Пронина Г.И.1, Орлов А.М.2,3,4,5,6, Артеменков Д.В.7, Бомко С.П.8, Грицай Е.В.8, Матвеев А.А.9
  • Учреждения:
    1. Российский государственный аграрный университет – Московская сельскохозяйственная академия им. К.А. Тимирязева (РГАУ-МСХА)
    2. Институт океанологии им. П.П. Ширшова РАН (ИО РАН)
    3. Дагестанский государственный университет (ДГУ)
    4. Прикаспийский институт биологических ресурсов ДФИЦ РАН (ПИБР ДФИЦ РАН)
    5. Томский государственный университет
    6. Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН
    7. Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии (ВНИРО)
    8. Тихоокеанский филиал ВНИРО (ТИНРО)
    9. Камчатский филиал ВНИРО (КамчатНИРО)
  • Выпуск: Том 50, № 4 (2024)
  • Страницы: 257-265
  • Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
  • Статья опубликована: 24.11.2024
  • URL: https://cardiosomatics.orscience.ru/0134-3475/article/view/670333
  • DOI: https://doi.org/10.31857/S0134347524040011
  • ID: 670333

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Исследованы гематологические параметры периферической крови тихоокеанского минтая Gadus chalcogrammus Pallas, 1814, тихоокеанской наваги Eleginus gracilis (Tilesius, 1810) и тихоокеанской трески Gadus macrocephalus Tilesius, 1810 из Охотского моря. Анализ лейкоцитарной формулы исследованных видов позволил выявить большую долю сегментоядерных нейтрофилов и миелоцитов у минтая, что свидетельствует о значительном потенциале их клеточного фактора врожденного иммунитета и большей активности кортикостероидных гормонов. Наиболее активный эритропоэз отмечен у G. chalcogrammus, вероятно, это связано с характерными для вида существенными вертикальными миграциями, сопряженными с резким изменением давления и необходимостью обеспечения организма кислородом. Высокий уровень лейкопоэза, выявленный у тихоокеанской наваги, возможно, определяется экологическими адаптациями вида к обитанию как в пресной, так и в морской воде.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Г. И. Пронина

Российский государственный аграрный университет – Московская сельскохозяйственная академия им. К.А. Тимирязева (РГАУ-МСХА)

Автор, ответственный за переписку.
Email: dmitriy.artemenkov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0805-6784
Россия, Москва, 127550

А. М. Орлов

Институт океанологии им. П.П. Ширшова РАН (ИО РАН); Дагестанский государственный университет (ДГУ); Прикаспийский институт биологических ресурсов ДФИЦ РАН (ПИБР ДФИЦ РАН); Томский государственный университет; Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН

Email: dmitriy.artemenkov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0877-2553
Россия, Москва, 117218; Махачкала, 367000; Махачкала, 450077; Томск, 634050; Москва, 119071

Д. В. Артеменков

Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии (ВНИРО)

Email: dmitriy.artemenkov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-9051-697X
Россия, Москва, 105187

С. П. Бомко

Тихоокеанский филиал ВНИРО (ТИНРО)

Email: dmitriy.artemenkov@gmail.com
Россия, Владивосток, 690091

Е. В. Грицай

Тихоокеанский филиал ВНИРО (ТИНРО)

Email: dmitriy.artemenkov@gmail.com
Россия, Владивосток, 690091

А. А. Матвеев

Камчатский филиал ВНИРО (КамчатНИРО)

Email: dmitriy.artemenkov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-2101-6207
Россия, Петропавловск-Камчатский, 683000

Список литературы

  1. Андрияшев А.П. Рыбы северных морей СССР. Л.: АН СССР, 1954. 566 с.
  2. Галактионов В.Г. Эволюционная иммунология: учебное пособие. М.: Академкнига, 2005. 408 с.
  3. Головина Н.А., Тромбицкий И.Д. Гематология прудовых рыб. Кишинев: Штиинца, 1989. 156 с.
  4. Головина Н.А. Морфофункциональная характеристика крови рыб – объектов аквакультуры: автореф. дис. … докт. биол. наук. М., 1996. 53 с.
  5. Дубровская Н.В. Биология и промысел дальневосточной наваги: автореф. дис. ... канд. биол. наук. М.: Мосрыбвтуз, 1954. 15 с.
  6. Житенева Л.Д., Полтавцева Т.Г., Рудницкая О.А. Атлас нормальных и патологически измененных клеток крови рыб. Ростов н/Д.: Ростов, 1989. 111 с.
  7. Заводский Р.Ю., Шевченко Ю.А., Конева О.Ю. и др. Иммунорегуляторная роль эритроидных ядросодержащих клеток // Иммунология. 2022. № 1. С. 103.
  8. Иванов А.А., Пронина Г.И., Корягина Н.Ю., Петрушин А.Б. Клиническая лабораторная диагностика в аквакультуре. Методические указания. М.: ТСХА, 2013. 50 с.
  9. Иванов А.А., Пронина Г.И., Корягина Н.Ю. Гематология пойкилотермных гидробионтов. Иркутск: Мегапринт, 2018. 133 с.
  10. Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб. М.: Легкая и пищ. пром-сть, 1983. 184 с.
  11. Колесник Е.А., Нохрин Д.Ю., Грибовский Ю.Г. и др. Оценка лейкоцитарного профиля промысловой рыбы из озер Челябинской области // Аграрный вестн. Урала. 2019. № 8 (187). С. 39–44.
  12. https://doi.org/10.32417/article_5d908b85dcb853.25473638
  13. Линдберг Г.У. Определитель и характеристика семейств рыб мировой фауны. Л.: Наука, 1971. 472 с.
  14. Липунова Е.А., Скоркина М.Ю. Система красной крови. Сравнительная физиология: Монография. Белгород: Изд-во БелГУ, 2004. 216 с.
  15. Микряков В.Р., Балабанова Л.В. Клеточные основы иммунитета у рыб. Физиология и паразитология пресноводных животных. Л.: Наука, 1979. С. 57–64.
  16. Микряков В.Р., Балабанова Л.В., Заботкина Е.А. и др. Реакция иммунной системы рыб на загрязнение воды токсикантами и закисление среды. М.: Наука, 2001. 126 с.
  17. Никитенко А.И., Пронина Г.И., Орлов А.М. и др. О периферической крови у трех видов рыб с разной экологией (Scombridae и Berycidae) // Изв. РАН. Сер. биол. 2022. № 6. C. 1–6.
  18. doi: 10.31857/S1026347022060117
  19. Пронина Г.И., Корягина Н.Ю. Референсные значения физиолого-иммунологических показателей гидробионтов разных видов // Вестн. Астрахан. гос. техн. ун-та. 2015. № 4. С. 103–108.
  20. Пронина Г.И., Орлов А.М., Артеменков Д.В. Параметры периферической крови двух видов глубоководных рыб семейства Веретенниковых (Paralepididae) // Изв. РАН. Сер. биол. 2021. № 4. C. 444–448.
  21. doi: 10.31857/S1026347021030139
  22. Световидов А.Н. Трескообразные. Фауна СССР. Рыбы. Т. 9. Вып. 4. М.-Л.: Изд. АН СССР, 1948. 221 с.
  23. Точилина Л.В. Лейкоцитарная формула морских рыб // Гидробиол. журн. 1994. Т. 30. № 3. С. 50–57.
  24. Фадеев Н.С. Справочник по биологии и промыслу рыб северной части Тихого океана. Владивосток: ТИНРО-Центр, 2005. 366 с.
  25. Федоров Н.А. Нормальное кроветворение и его регуляция. М.: Медицина, 1976. 544 с.
  26. Barton B.A. Stress in fishes: a diversity of responses with particular reference to changes in circulating corticosteroids // Integr. Comp. Biol. 2002. V. 42. № 3. P. 517–525.
  27. Chikurova E.A., Orlov A.M., Shchepetov D.M., Orlova S.Y. Separated by space and time but united by kinship: Phylogeographical and phylogenetic history of two species of Eleginus (Gadidae) based on the polymorphism of Cyt b mitochondrial DNA gene // J. Ichthyol. 2023. V. 63. № 2. P. 216241.
  28. https://doi.org/10.1134/s0032945223020042
  29. Clauss T.M., Dove A.D.M., Arnold J.E. Hematologic disorders of fish // Vet. Clin. North Am.: Exot. Anim. Pract. 2008. V. 11. № 3. P. 445–462.
  30. Cohen D.M., Inada T., Iwamoto T., Scialabba N. FAO Species Catalogue. V. 10. Gadiform Fishes of the World (Order Gadiformes): an Annotated and Illustrated Catalogue of Cods, Hakes, Grenadiers and Other Gadiform Fishes Known to Date // FAO Fisheries Synopsis. № 125. V. 10. Rome: FAO, 1990.
  31. Cooper D.W., Cieciel K., Copeman L. et al. Pacific cod or tikhookeanskaya treska (Gadus macrocephalus) in the Chukchi Sea during recent warm years: Distribution by life stage and age-0 diet and condition // Deep Sea Res. Part II. 2023. V. 208. Art. ID 105241.
  32. https://doi.org/10.1016/j.dsr2.2022.105241
  33. Devries A.L. Biological antifreeze agents in coldwater fishes // Comp. Biochem. Physiol. Part A: Phisiol. 1982. V. 73. № 4. P. 627–640.
  34. Dunn J.R., Matarese A.C. Gadidae: Development and Relationships. New York: Am. Soc. Ichthyologists Herpetologists, 1984. P. 283–299.
  35. Ellis A.E. Innate host defense mechanisms of fish against viruses and bacteria // Dev. Comp. Immunol. 2001. V. 25. P. 827–839.
  36. FAO Fisheries and Aquaculture: FishStatJ – Software for Fishery and Aquaculture Statistical Time Series.
  37. https://www.fao.org/fishery/en/statistics/software/fishstatj. Accessed September 19, 2023.
  38. Fischer U., Utke K., Somamoto T. et al. Cytotoxic activities of fish leucocytes // Fish Shellfish Immunol. 2006. V. 20. P. 209–226.
  39. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2005.03.013
  40. Fricke R., Eschmeyer W.N., Fong J.D. Eschmeyer’s catalog of fishes: genera/species by family/subfamily.
  41. http://researcharchive.calacademy.org/research/ichthyology/catalog/SpeciesByFamily.asp Accessed September 28, 2023.
  42. Hart J.L. Pacific Fishes of Canada // Bulletin of the Fisheries Research Board of Canada. V. 180. Ottawa: Fish. Res. Board Can., 1973.
  43. Mecklenburg C.W., Lynghammar A., Johannesen E. et al. Marine fishes of the Arctic Region. V. 1. CAFF Monitoring Series Report 28. Akureyri, Iceland: Conservation of Arctic Flora and Fauna, 2018.
  44. Orlov A.M., Rybakov M.O., Vedishcheva E.V. et al. Walleye pollock Gadus chalcogrammus, a species with continuous range from the Norwegian Sea to Korea, Japan, and California: new records from the Siberian Arctic // J. Mar. Sci. Eng. 2021. V. 9. Art. ID 1141.
  45. https://doi.org/10.3390/jmse9101141
  46. Orlov A.M., Tokranov A.M. Checklist of deep-sea fishes of the Russian northwestern Pacific Ocean found at depths below 1000 m // Prog. Oceanogr. 2019. V. 176. Art. ID 102143.
  47. https://doi.org/10.1016/j.pocean.2019.102143
  48. Parish N., Wrathmell A., Hart S., Harris J.E. The leucocytes of the elasmobranch Scyliorhinus vanicula L. – a morphological study // J. Fish. Biol. 1986. V. 28. № 5. P. 545–561.
  49. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1986.tb05192.x
  50. Sarantseva K.A., Laktionova L.V., Reutova E.V. et al. Immunology: immune response as leading protectionfactor against cancer // Zlokach. Opukholi. 2016. V. 2. P. 5–14.
  51. https://doi.org/10.18027/2224-5057-2016-2-5-14
  52. Witeska M. Erythrocytes in teleost fishes: a review // Zool. Ecol. 2013. V. 23. № 4. P. 275–281.
  53. https://doi.org/10.1080/21658005.2013.846963
  54. Wolotira R.J. Saffron Cod (Eleginus gracilis) in Western Alaska: The Resource and Its Potential // NOAA Technical Memorandum NMFS F/NWC-79, Seattle, Wash.: U.S. Department of Commerce, 1985.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Клетки крови минтая Gadus chalcogrammus (а), наваги Eleginus gracilis (б) и трески Gadus macrocephalus (в). Масштаб: 10 мкм. Условные обозначения: 1 – эритробласты, 2 – нормобласты, 3 – базофильные эритроциты, 4 – зрелые и полихроматофильные эритроциты, 5 – миелобласты, 6 – миелоциты, 7 – метамиелоциты, 8 – палочкоядерные нейтрофилы, 9 – сегментоядерные нейтрофилы, 10 – моноциты и 11 – лимфоциты.

Скачать (753KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024